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5.5 : Questions post-laboratoires - Biologie


5.5 : Questions post-laboratoires

Questions de laboratoire de biologie

Des lunettes de sécurité ou des lunettes de sécurité doivent toujours être portées à l'intérieur d'un laboratoire de chimie pour protéger vos yeux.

2. Faut-il ajouter de l'acide à l'eau ou de l'eau à l'acide ?

3. Où faut-il jeter le verre brisé ?

Ils doivent être placés dans le conteneur approprié pour l'élimination des objets tranchants. Ils ne doivent jamais être jetés dans une poubelle ordinaire.

4. Que faire si vous renversez un produit chimique sur votre main ?

Vous devez immédiatement vous laver les mains avec de grandes quantités d'eau et de savon antibactérien.

Exercice 1 : Qu'est-ce que c'est ?

Un laboratoire chimique contient un équipement spécial à utiliser pendant que vous effectuez une expérience. Localisez chacun des éléments illustrés sur les pages suivantes dans votre trousse de laboratoire et cochez l'endroit approprié lorsque vous le trouvez. Une fois que vous avez terminé, dessinez une image et nommez tous les éléments supplémentaires qui se trouvent dans votre trousse de laboratoire, votre salle de classe ou votre maison et qui sont susceptibles de vous être utiles pour réaliser ces laboratoires.

50 ml ____X_____

Remuez le bâton__X_______

250 ml ___x______ Cylindre Gradué

Tube à essai ___X______ Pipette ___x______ Boîte de Pétri ___x______

Incluez vos dessins ici :

Expérience 1 : Neutralisation des acides et des bases

Dans cette expérience, vous apprendrez à bien neutraliser et éliminer les solutions acides et basiques.

Matériaux5 ml d'acide acétique (vinaigre) à 4,5 %, C2H4O2 (1) cylindre gradué de 10 ml 8 bandelettes de test de tournesol (neutre) marqueur permanent 2 pipettes 1 g de bicarbonate de sodium (bicarbonate de soude), NaHCO3 4 bateaux de pesée * eau * vous devez fournir

1. Utilisez le marqueur permanent pour étiqueter trois des bateaux de pesée comme A – C.

2. Mesurez et versez environ 5 ml d'eau dans la nacelle de pesée “A”.

3. Ajoutez 0,5 g de bicarbonate de sodium pour peser le bateau “B”.

4. Mesurez et versez environ 5 ml d'eau dans la nacelle de pesée “B”. Pipeter doucement la solution de haut en bas jusqu'à ce que le bicarbonate de sodium soit complètement dissous dans l'eau.

5. Mesurer et verser 5 ml de solution d'acide acétique pour peser le bateau “C”.

6. Utilisez les bandelettes de test de tournesol pour déterminer si les substances contenues dans les nacelles de pesée A – C sont acides ou basiques. Ceci est accompli en trempant brièvement une bande inutilisée du papier de tournesol dans chacun des bateaux de pesée. Enregistrez vos résultats de couleur dans le tableau 2.

7. Pipeter 1 ml de solution de bicarbonate de sodium de la nacelle de pesée “B” dans la nacelle de pesage “C”. Agiter doucement le bateau de pesée “C” pour mélanger.

8. Développer et enregistrer une hypothèse concernant le pH du bateau de pesée « C ». Enregistrez-le dans la section Questions post-laboratoire.

9. Testez le pH du bateau de pesée “C” à l'aide d'un nouveau papier de tournesol. Enregistrez votre résultat dans le tableau 3.

10. Répétez l'étape 9 quatre fois de plus jusqu'à ce que tout le bicarbonate de sodium ait été ajouté pour peser le bateau « C ».

Tableau 2 : Résultats du test décisif initial
Peser le bateauContenu chimiqueRésultats décisifsObservations supplémentaires
UNE
B
C
Tableau 3 : Neutralisation d'un acide
Montant de baseRésultat décisif
1 ml
2 ml
3 ml
4 ml
5 ml

Questions post-laboratoire

1. Énoncez votre hypothèse (développée à l'étape 8) ici. Assurez-vous d'inclure ce que vous pensez que le pH sera, et pourquoi.

2. Qu'est-ce qu'une réaction de neutralisation ?

3. Quand les réactions de neutralisation peuvent-elles être utilisées en laboratoire ?

4. À quel moment l'acide acétique dans la nacelle de pesée « C » a-t-il été neutralisé ?

5. Selon vous, quels auraient été les résultats si une solution plus forte de bicarbonate de sodium avait été utilisée ? Faudrait-il plus ou moins pour neutraliser l'acide ? Qu'en est-il d'une concentration plus faible de bicarbonate de sodium ?

Questions pré-laboratoires

1. Énumérez les numéros atomiques de chacun des éléments suivants.

Le fer_________Oxygène_________
Calcium_________Azote_________
Potassium_________Hydrogène_________

2. Qu'est-ce qui détermine si une liaison est polaire ?

3. Utilisez le tableau périodique pour déterminer si le chlorure de potassium (KCl) s'est formé par des liaisons covalentes ou ioniques ? Utilisez les preuves de l'introduction pour étayer votre réponse.

4. Recherchez deux molécules polaires communes et deux molécules non polaires communes. Dessinez leur structure moléculaire et expliquez comment la structure rend chaque molécule polaire ou non polaire.

Expérience 1: Slime Time

Les encres peuvent être polaires ou non polaires. Les solvants polaires captent les encres polaires, tandis que les solvants non polaires captent les encres non polaires. Dans cette expérience, vous utiliserez des encres pour identifier la boue et le mastic idiot comme polaires ou non polaires. Vous utiliserez également la chromatographie sur papier pour vérifier que les encres sont correctement identifiées comme polaires ou non polaires.

Matériaux(1) bécher de 250 ml 5 ml de solution de borax à 4 %, marqueur effaçable à sec Na2B4O7·10H2O (1) cylindre gradué de 10 ml (1) cylindre gradué papier filtre (disque) papier filtre (carré) 0,5 g marqueur permanent surligneur gomme de guar 1 bâtonnet de glaceSilly Putty® Ruler Wooden Stir Stick Uni-ball® Roller Pen * Eau distillée ou du robinet * Journal * Papier pour cahier * Ciseaux * Vous devez fournir

Partie 1 : Faire du slime

1. Peser 0,5 g de gomme de guar dans un bécher de 250 ml.

2. Mesurer 50,0 ml d'eau distillée dans un cylindre gradué de 100 ml et le verser dans le bécher de 250 ml qui contient la gomme de guar.

3. Remuer rapidement le mélange avec un bâtonnet en bois pendant trois minutes, ou jusqu'à ce que la gomme de guar soit dissoute.

4. Mesurer 4,00 ml d'une solution de borax à 4 % dans un cylindre gradué de 10 ml et l'ajouter à la gomme de guar et à l'eau.

5. Remuez la solution jusqu'à ce qu'elle devienne visqueuse. Cela prendra quelques minutes. Si le slime reste trop liquide, ajoutez 1,0 ml supplémentaire de solution de borax à 4,0% et continuez à remuer jusqu'à ce que le slime soit légèrement coulant ou gluant.

6. Une fois que vous êtes satisfait du slime, versez-le dans vos mains. Assurez-vous de ne pas en laisser tomber par terre.

7. Manipulez le slime dans vos mains. Notez les observations faites sur la façon dont la boue coule, s'étire, se brise, etc. dans la partie 1 de la section Données. AVERTIR: La boue est glissante et si elle tombe, elle peut rendre la zone de travail glissante.

8. Remettez le slime dans le bécher et LAVEZ-VOUS LES MAINS.

Partie 2 : Tests d'encre Slime et Putty

1. Sur un morceau de papier pour cahier, faites une marque de 20 à 25 mm de long de chacune des encres que vous testez (marqueur permanent, surligneur, effaçable à sec et stylo à bille Uni-ball®). Espacez les marques d'au moins un pouce d'intervalle. Utilisez un crayon pour étiqueter chaque marque avec sa description.

une. Encres hydrosolubles inclure ceux des surligneurs et de certains stylos.

b. Encres insolubles dans l'eau inclure ceux dans un stylo/marqueurs permanents, du papier journal et des marqueurs effaçables à sec.

2. Pendant que les encres sèchent, sélectionnez un passage ou une image dans le journal à tester avec le slime.

3. Développez une hypothèse indiquant si vous pensez que la boue produite dans la partie 1 va absorber l'encre du papier journal. Enregistrez cette hypothèse dans la section Questions post-laboratoire. Ensuite, cassez un petit morceau de bave de 3 – 5 cm de diamètre. Placez délicatement ce morceau sur l'impression du journal, puis ramassez-le soigneusement à nouveau.

4. Observez et notez dans le tableau 1 si l'encre a été absorbée ou non par la boue.

5. Cassez un autre petit morceau de slime. Une fois que les encres de l'étape 1 ont séché, placez délicatement le slime au-dessus du premier endroit sur le papier du bloc-notes, puis ramassez-le avec précaution. Répétez cette opération pour chacune des encres. Observez et notez quelles encres ont été captées (dissoutes) par la boue dans le tableau 1.

6. Répétez ce test d'encre deux fois de plus pour plus de précision.

7. Faites une hypothèse sur les encres que le mastic idiot reprendra dans la partie 2 de la section Données. Ensuite, effectuez les tests d'encre avec le Silly Putty® selon la procédure décrite dans les étapes 5 – 6.

Partie 3 : Chromatographie des échantillons d'encre

Image 7 :Appareil de chromatographie pour la procédure Partie 3.

1. Utilisez un crayon ou des ciseaux pour piquer un petit trou au centre d'un morceau de papier filtre (voir Figure 7).

2. Repérez le papier filtre régulièrement espacé d'environ 2 cm du petit trou avec les deux encres insolubles et les deux encres solubles qui ont été utilisées dans la partie 2, étape 1.

3. Procurez-vous un ½ morceau de papier filtre. Pliez le papier en deux plusieurs fois pour qu'il fasse une mèche étroite.

4. Insérez la mèche dans le trou du papier tacheté de manière à ce qu'elle se trouve au-dessus du haut du papier filtre d'environ 2 cm.

5. Remplissez un bécher de 250 mL au d'eau.

6. Placez le papier filtre sur le bécher de sorte que le bas de la mèche soit dans l'eau. Le papier doit dépasser du bord du bécher avec le côté tacheté vers le haut.

7. Laissez l'eau s'écouler jusqu'à ce qu'elle se trouve à environ 1 cm du bord du papier filtre. Retirez le papier filtre du bécher.

8. Observez quelles encres se sont déplacées de l'endroit où elles ont été repérées à l'origine. Notez vos observations dans la partie 3 de la section Données.

Tableau 1 : Résultats des tests d'encre pour Silly Putty®
Nom de l'encreRamassé (dissous)N'a pas décroché
Essai 1Essai 2Essai 3Essai 1Essai 2Essai 3
Papier journal
Surligneur
Stylo à bille roulante Uni-ball®
Marqueur permanent
Marqueur effaçable à sec

· Hypothèse pour Silly Putty® (Procédure Partie 2, Étape 7) :

· Observations des encres après chromatographie :

Questions post-laboratoire

1. Notez ici votre hypothèse concernant la capacité du slime à absorber l'encre du papier journal.

2. La boue a-t-elle absorbé des encres solubles ou insolubles dans l'eau ? De ces résultats, que pouvez-vous conclure sur la polarité des molécules de boue ?

3. Expliquez comment vous avez déterminé votre hypothèse quant à savoir si un mastic stupide absorberait ou non des encres solubles dans l'eau. Votre hypothèse était-elle correcte ?

4. Les encres que vous avez utilisées étaient-elles correctement classées comme solubles et insolubles ? Expliquez votre réponse.

Questions préalables au laboratoire

1. La fixation de l'azote est un processus naturel par lequel des formes inertes ou non réactives d'azote sont transformées en azote utilisable. Pourquoi ce processus est-il important pour la vie ?

2. Compte tenu de ce que vous avez appris sur la liaison hydrogène partagée entre les acides nucléiques de l'ADN, quelle paire est la plus stable sous une chaleur croissante : adénine et thymine, ou cytosine et guanine ? Expliquer pourquoi.

3. Lequel des éléments suivants n'est pas une molécule organique méthane (CH4), fructose (C6H12O6), rosane (C20H36) ou ammoniac (NH3) ? Comment savez-vous?

Expérience 1 : Tester les protéines

Les molécules de protéines présentes dans de nombreux aliments fournissent les éléments constitutifs des acides aminés nécessaires à nos propres cellules pour produire de nouvelles protéines. Pour déterminer si un échantillon contient des protéines, un réactif appelé solution de Biuret est utilisé. La solution de Biuret contient des ions cuivre. Cependant, l'état chimique des ions cuivre dans la solution de Biuret les amène à former un complexe chimique avec les liaisons peptidiques entre les acides aminés (lorsqu'ils sont présents), changeant la couleur de la solution. La solution de biuret est normalement bleue, mais vire au rose lorsque des peptides courts sont présents et au violet lorsque des polypeptides longs sont présents.

Figure 6 :Seule la solution de Biuret est située à l'extrême gauche de l'image (bleu). Notez la transition du bleu au violet lorsque des protéines sont ajoutées à la solution, provoquant la transition de la solution du bleu au violet.
Matériaux(2) béchers de 250 ml 25 gouttes de solution de biuret, H2NC(O)NHC(O)NH (1) sachet de gélatine Knox® 5 ml de solution de glucose à 1 %, C6H12O6 (1) cylindre gradué de 10 ml (1) cylindre gradué de 100 ml permanent Marqueur 5 Pipettes5 tubes à essai (plastique) Support pour tubes à essai 5 ml de solution inconnue *Eau du robinet *Eau chaude *Blanc d'œuf *Vous devez fournir

1. Étiquetez cinq tubes à essai 1, 2, 3, 4 et 5.

2. Préparez vos échantillons de test comme suit :

une. Mélanger un blanc d'œuf avec 25 ml d'eau dans un bécher de 250 ml pour créer une solution d'albumine. Pipeter 5 ml de cette solution dans le tube à essai 1.

b. Mélanger le sachet de gélatine Knox® avec 50 ml d'eau chaude dans un deuxième bécher de 250 ml. Remuer jusqu'à dissolution. Pipeter 5 ml de cette solution dans le tube à essai 2.

3. Pipeter 5 ml de solution de glucose à 1 % dans le tube à essai 3.

4. Utilisez le cylindre gradué de 10 ml pour mesurer et versez 5 ml d'eau dans le tube à essai 4.

5. Pipeter 5 ml de la « solution inconnue » dans le tube à essai 5.

6. Enregistrez la couleur initiale de chaque échantillon dans le tableau 1.

7. Développez une hypothèse concernant ce que vous prévoyez se passer lorsque la solution de Biuret est ajoutée aux tubes 1 – 4. Enregistrez votre hypothèse dans la section Question post-laboratoire. Ensuite, pipetez cinq gouttes de solution de Biuret dans chaque tube à essai (1 – 5). Agiter chaque tube pour mélanger.

8. Noter la couleur finale dans le tableau 1. Remarque : La protéine est présente dans l'échantillon si une couleur violet clair est observée.

Tableau 1 : Résultats des tests de protéines
ÉchantillonCouleur initialeCouleur finaleProtéine présente
1 – Solution d'albumine
2 – Solution de gélatine
3 – Glucose
4 – Eau
5 – Inconnu

Questions post-laboratoire

1. Notez ici votre hypothèse sur ce qui se passera lorsque la solution de Biuret est mélangée avec les solutions des tubes à essai 1, 2, 3 et 4. Assurez-vous d'utiliser un raisonnement scientifique pour étayer votre hypothèse.

2. Rédigez un énoncé expliquant la composition moléculaire de la solution inconnue sur la base des résultats obtenus lors du test avec chaque réactif.

3. L'alimentation et la nutrition sont étroitement liées à l'étude des biomolécules. Comment devez-vous surveiller votre apport alimentaire pour vous assurer que les cellules de votre corps disposent des matériaux nécessaires pour fonctionner ?

4. La molécule illustrée ci-dessous a produit une couleur bleue lorsqu'elle est testée avec le réactif de Benedict, une couleur jaune lorsqu'elle est testée avec l'IKI et une couleur violette lorsqu'elle est testée avec le réactif Biuret. Sur la base de la structure ci-dessous et de ces résultats chimiques, de quel type de biomolécule s'agit-il ?

Questions préalables au laboratoire

1. Un gradient de concentration affecte la direction dans laquelle les solutés diffusent. Décrivez comment les molécules se déplacent par rapport à la concentration.

2. Comment la taille d'un soluté affecte-t-elle la vitesse de diffusion ? Tenez compte de la taille et de la forme d'une molécule dans votre réponse.

3. La polarité affecte-t-elle la diffusion ? Explique ta réponse en utilisant des principes scientifiques.

Expérience 1 : Diffusion à travers un liquide

Dans cette expérience, vous observerez l'effet que différents poids moléculaires ont sur la capacité du colorant à traverser un milieu visqueux.

Matériaux1 bouteille de sirop de maïs de 60 ml, solutions de colorant rouge et bleu C12H22O11 (poids moléculaire bleu = 793 g/mole poids moléculaire rouge = 496 g/mole) (1) boîte de Pétri de 9 cm (moitiés supérieure et inférieure)Règle * Chronomètre * Ruban * Vous devez fournir

1. Utilisez du ruban adhésif transparent pour fixer une moitié (la moitié inférieure ou la moitié supérieure est fine) de la boîte de Pétri sur une règle. Assurez-vous que vous pouvez lire les marques de mesure sur la règle à travers la boîte de Pétri. Le plat doit être positionné avec l'extrémité ouverte du plat vers le haut.

2. Remplissez soigneusement la moitié de la boîte de Pétri avec du sirop de maïs jusqu'à ce que toute la surface soit couverte.

3. Développez une hypothèse en discutant du colorant qui, selon vous, se diffusera plus rapidement dans le sirop de maïs et pourquoi. Enregistrez-le dans la section Questions post-laboratoire. Ensuite, placez une seule goutte de colorant bleu au milieu du sirop de maïs. Notez la position où le colorant est tombé en lisant l'emplacement du bord extérieur du colorant sur la règle.

4. Enregistrez l'emplacement à l'extérieur du bord du colorant (la distance qu'il a parcourue) toutes les dix secondes pour un total de deux minutes. Enregistrez vos données dans les tableaux 1 et 2.

5. Répétez les étapes 1 – 4 en utilisant le colorant rouge, la seconde moitié de la boîte de Pétri et du sirop de maïs frais.

Tableau 1 : Taux de diffusion dans le sirop de maïs
Temps (sec)Colorant bleuTeinture RougeTemps (sec)Colorant bleuTeinture Rouge
10 70
20 80
30 90
40 100
50 110
60 120
Tableau 2 : Vitesse de diffusion de différents colorants de poids moléculaire
StructureMasse moléculaireDistance totale parcourue (mm)Vitesse de diffusion (mm/h)*
Colorant bleu
Teinture Rouge

*Multipliez la distance totale diffusée par 30 pour obtenir le taux de diffusion horaire

Questions post-laboratoire

1. Enregistrez votre hypothèse de l'étape 3 ici. Assurez-vous de valider vos prédictions avec un raisonnement scientifique.

2. Quel colorant s'est diffusé le plus rapidement ?

3. La vitesse de diffusion correspond-elle au poids moléculaire du colorant ?

4. Le taux de diffusion change-t-il avec le temps ? Pourquoi ou pourquoi pas?

5. Examinez le graphique ci-dessous. Correspond-il aux données que vous avez enregistrées dans le tableau 2 ? Expliquez pourquoi ou pourquoi pas. Soumettez votre propre parcelle si nécessaire.

Expérience 2 : Gradients de concentration et perméabilité membranaire

Dans cette expérience, vous dialysez une solution de glucose et d'amidon pour observer :

· Le mouvement directionnel du glucose et de l'amidon.

· L'effet d'une membrane sélectivement perméable sur la diffusion de ces molécules.

Un indicateur est une substance qui change de couleur lorsqu'elle est en présence de la substance qu'elle indique. Dans cette expérience, IKI sera utilisé comme indicateur pour tester la présence d'amidon et de glucose.

Matériaux(5) béchers de 100 ml 10 ml de solution de glucose à 1 %, C6H12O6 4 bandelettes de test de glucose (1) cylindre gradué de 100 ml 4 ml d'iodure de potassium à 1 %, IKI 5 ml d'amidon liquide, C6H10O5 3 pipettes 4 élastiques (petits contenant du latex , manipuler avec des gants en cas d'allergie)*Chronomètre *Eau *Ciseaux *Tube de dialyse de 15,0 cm *Vous devez fournir *Assurez-vous de mesurer et de couper uniquement la longueur dont vous avez besoin pour cette expérience. Réservez le reste pour des expériences ultérieures.
Attention!Ne laissez pas l'extrémité ouverte du tube de dialyse tomber dans le bécher. Si c'est le cas, retirez le tube et rincez abondamment à l'eau avant de remplir à nouveau avec une solution d'amidon/glucose et de le remettre dans le bécher.
Noter:· Le tube de dialyse peut être rincé et réutilisé si vous faites une erreur. · Le tube de dialyse doit être trempé dans l'eau avant de pouvoir l'ouvrir pour créer le “bag”. Suivez les instructions pour l'expérience, en commençant par tremper le tube dans un bécher d'eau. Ensuite, placez le tube de dialyse entre votre pouce et votre index et frottez les deux doigts ensemble de manière à cisailler. Cela devrait ouvrir le “tube” afin que vous puissiez le remplir avec les différentes solutions.

1. Mesurer et verser 50 ml d'eau dans un bécher de 100 ml. Couper un morceau de tube de dialyse de 15,0 cm de long. Immerger le tube de dialyse dans l'eau pendant au moins 10 minutes.

2. Mesurer et verser 82 ml d'eau dans un deuxième bécher de 100 ml. Il s'agit du bécher dans lequel vous mettrez la poche de dialyse remplie à l'étape 9.

3. Pendant que la poche de dialyse trempe encore, préparez le mélange glucose/saccharose. Utilisez une pipette graduée pour ajouter cinq ml de solution de glucose dans un troisième bécher et étiquetez-le « solution de sac de dialyse ». Utilisez une autre pipette graduée pour ajouter cinq ml de solution d'amidon dans le même bécher. Mélanger en pipetant la solution de haut en bas de la pipette six fois.

4. À l'aide de la même pipette que vous avez utilisée pour mélanger la solution du sac de dialyse, prélevez deux ml de cette solution et placez-la dans un bécher propre. Cet échantillon servira de contrôle positif pour le glucose et l'amidon.

une. Trempez l'une des bandelettes de test de glucose dans les deux ml de solution de glucose/amidon dans le troisième bécher. Après une minute, notez la couleur finale de la bandelette de test de glucose dans le tableau 3. Il s'agit de votre contrôle positif pour le glucose.

b.Utilisez une pipette pour transférer environ 0,5 ml d'IKI dans les deux ml de solution de glucose/amidon dans le troisième bécher. Après une minute, notez la couleur finale de la solution de glucose/amidon dans le bécher dans le tableau 3. Ceci est votre contrôle positif pour l'amidon.

5. À l'aide d'une pipette propre, prélevez deux ml d'eau des 82 ml d'eau que vous avez placés dans un bécher à l'étape 2 et placez-les dans un bécher propre. Cet échantillon servira de contrôle négatif pour le glucose et l'amidon.

une. Trempez l'une des bandelettes de test de glucose dans les deux ml d'eau du bécher. Après une minute, notez la couleur finale de la bandelette de test de glucose dans le tableau 3. Il s'agit de votre contrôle négatif pour le glucose.

b. Utilisez une pipette pour transférer environ 0,5 ml d'IKI dans les deux ml d'eau dans le bécher. Après une minute, notez la couleur finale de l'eau dans le bécher dans le tableau 3. Ceci est votre contrôle négatif pour l'amidon.

Remarque : Les résultats de couleur de ces contrôles déterminent la clé du réactif indicateur. Vous devez utiliser ces résultats pour interpréter le reste de vos résultats.

6. Après au moins 10 minutes, retirer le tube de dialyse et fermer une extrémité en pliant sur 3,0 cm d'une extrémité (en bas). Pliez-le à nouveau et fixez-le avec un élastique (utilisez deux élastiques si nécessaire).

7. Assurez-vous que l'extrémité fermée ne permettra pas à une solution de s'échapper. Vous pouvez tester cela en séchant l'extérieur du sac de dialyse avec un chiffon ou une serviette en papier, en ajoutant une petite quantité d'eau dans le sac et en examinant le joint élastique pour détecter les fuites. Assurez-vous de retirer l'eau de l'intérieur du sac avant de continuer.

8. À l'aide de la même pipette que celle utilisée pour mélanger la solution à l'étape 3, transférez huit ml de la solution du bécher de solution de la poche de dialyse dans la poche de dialyse préparée.

Figure 4 :Référence de l'étape 9.

9. Placer le tube de dialyse rempli dans un bécher rempli de 80 ml d'eau avec l'extrémité ouverte drapée sur le bord du bécher comme illustré à la figure 4.

10. Laissez la solution reposer pendant 60 minutes. Nettoyez et séchez tous les matériaux à l'exception du bécher avec le sac de dialyse.

11. Après que la solution ait diffusé pendant 60 minutes, retirez le tube de dialyse du bécher et videz le contenu dans un bécher propre et sec. Étiquetez-le solution de sac de dialyse.

12. Testez la solution du sac de dialyse pour la présence de glucose et d'amidon. Testez la présence de glucose en plongeant directement une bandelette de test de glucose dans le sac de dialyse. Encore une fois, attendez une minute avant de lire les résultats des bandelettes de test. Enregistrez vos résultats pour la présence de glucose et d'amidon dans le tableau 4. Testez la présence d'amidon en ajoutant deux ml d'IKI. Enregistrez la couleur finale dans le tableau 4 après qu'une minute se soit écoulée.

13. Testez la solution dans le bécher pour le glucose et l'amidon. Utilisez une pipette pour transférer huit ml de la solution dans le bécher dans un bécher propre. Testez la présence de glucose en plongeant une bandelette de test de glucose dans le bécher. Attendez une minute avant de lire les résultats de la bandelette réactive et notez les résultats dans le tableau 4. Ajoutez deux ml d'IKI à l'eau du bécher et notez la couleur finale de la solution du bécher dans le tableau 4.

Tableau 3 : Données du réactif indicateur
IndicateurContrôle Positif Amidon (Couleur)Amidon Contrôle Négatif (Couleur)Contrôle Positif Glucose (Couleur)Contrôle Négatif Glucose (Couleur)
Solution IKI n / An / A
Bandelette de test de glucosen / An / A
Tableau 4 : Diffusion de l'amidon et du glucose au fil du temps
IndicateurSac de dialyse après 1 heureEau du bécher après 1 heure
Solution IKI
Bandelette de test de glucose

Questions post-laboratoire

1. Pourquoi est-il nécessaire d'avoir des contrôles positifs et négatifs dans cette expérience ?

2. Dessinez un schéma du montage expérimental. Utilisez des flèches pour décrire le mouvement de chaque substance dans le sac de dialyse et le bécher.

3. Quelle(s) substance(s) a traversé la membrane de dialyse ? Soutenez votre réponse avec des preuves basées sur des données.

4. Quelles molécules sont restées à l'intérieur de la poche de dialyse ?

5. Est-ce que toutes les molécules ont diffusé hors du sac dans le bécher ? Pourquoi ou pourquoi pas?


Partie 1 : Questions post-laboratoire 1. Mettez en place et complétez les carrés de Punnett pour ces croix (rappelez-vous Y = jaune, y = bleu) : a. AA et AA b. AA et aa 2. Répondez à ces questions : a. Quels sont les phénotypes résultants ? b. Y a-t-il des grains bleus ? C. Comment savoir s'il y a ou non des grains bleus ? 3. Configurez et complétez un carré de Punnett pour un croisement de deux des F1 de l'étape 1 (ci-dessus). 4. Répondez à ces questions : a. Quels sont les génotypes de la génération F2 ? b. Quels sont leurs phénotypes ? C. Y a-t-il plus ou moins de grains bleus que dans la génération F1 ? 5. Identifie les quatre gamètes possibles produits par les individus suivants (Y = jaune, y = bleu, S = lisse, s = ridé) : a. YY Ss : © eScience Labs, 2018

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Partie 1 : Questions post-laboratoire 1. Mettez en place et complétez les carrés de Punnett pour ces croix (rappelez-vous Y = jaune, y = bleu) : a. AA et AA b. AA et aa 2. Répondez à ces questions : a. Quels sont les phénotypes résultants ? b. Y a-t-il des grains bleus ? C. Comment savoir s'il y a ou non des grains bleus ? 3. Configurez et complétez un carré de Punnett pour un croisement de deux des F1 de l'étape 1 (ci-dessus). 4. Répondez à ces questions : a. Quels sont les génotypes de la génération F2 ? b. Quels sont leurs phénotypes ? C. Y a-t-il plus ou moins de grains bleus que dans la génération F1 ? 5. Identifie les quatre gamètes possibles produits par les individus suivants (Y = jaune, y = bleu, S = lisse, s = ridé) : a. YY Ss : © eScience Labs, 2018


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Laboratoire de biologie

1. Que devez-vous toujours porter pour protéger vos yeux lorsque vous êtes dans le laboratoire de chimie ?

Des lunettes de sécurité ou des lunettes de sécurité doivent toujours être portées à l'intérieur d'un laboratoire de chimie pour protéger vos yeux.

2. Faut-il ajouter de l'acide à l'eau ou de l'eau à l'acide ?

3. Où devez-vous jeter le verre brisé ?

Ils doivent être placés dans le conteneur approprié pour l'élimination des objets tranchants. Ils ne doivent jamais être jetés dans une poubelle ordinaire.

4. Que faire si vous renversez un produit chimique sur votre main ?

Vous devez immédiatement vous laver les mains avec de grandes quantités d'eau et de savon antibactérien.

Un laboratoire chimique contient un équipement spécial à utiliser pendant que vous effectuez une expérience. Localisez chacun des éléments illustrés sur les pages suivantes dans votre trousse de laboratoire et cochez l'endroit approprié lorsque vous le trouvez. Une fois que vous avez terminé, dessinez une image et nommez tous les éléments supplémentaires qui se trouvent dans votre trousse de laboratoire, votre salle de classe ou votre maison et qui sont susceptibles de vous être utiles pour réaliser ces laboratoires.

250 ml ___x______ Cylindre gradué

image9.png100 ml __x_______

Tube à essai ___x______ Pipette ___x______ Boîte de Pétri ___x______

Incluez vos dessins ici :

Expérience 1 : Neutralisation des acides et des bases

image12.jpgDans cette expérience, vous apprendrez à bien neutraliser et éliminer les solutions acides et basiques.

5 ml d'acide acétique (vinaigre) à 4,5 %, C2H4O2 (1) cylindre gradué de 10 ml 8 bandelettes de test de tournesol (neutre) marqueur permanent 2 pipettes 1 g de bicarbonate de sodium (bicarbonate de soude), NaHCO3

1. Utilisez le marqueur permanent pour étiqueter trois des bateaux de pesée comme A – C.

2. Mesurez et versez environ 5 ml d'eau dans la nacelle de pesée “A”.

3. Ajoutez 0,5 g de bicarbonate de sodium pour peser le bateau “B”.

4. Mesurez et versez environ 5 ml d'eau dans la nacelle de pesée “B”. Pipeter doucement la solution de haut en bas jusqu'à ce que le bicarbonate de sodium soit complètement dissous dans l'eau.

5. Mesurer et verser 5 ml de solution d'acide acétique pour peser le bateau “C”.

6. Utilisez les bandelettes de test de tournesol pour déterminer si les substances contenues dans les nacelles de pesée A – C sont acides ou basiques. Ceci est accompli en trempant brièvement une bande inutilisée du papier de tournesol dans chacun des bateaux de pesée. Enregistrez vos résultats de couleur dans le tableau 2.

7. Pipeter 1 ml de solution de bicarbonate de sodium de la nacelle de pesée “B” dans la nacelle de pesage “C”. Agiter doucement le bateau de pesée “C” pour mélanger.

8. Développer et enregistrer une hypothèse concernant le pH du bateau de pesée « C ». Enregistrez-le dans la section Questions post-laboratoire.

9. Testez le pH du bateau de pesée “C” à l'aide d'un nouveau papier de tournesol. Enregistrez votre résultat dans le tableau 3.

10. Répétez l'étape 9 quatre fois de plus jusqu'à ce que tout le bicarbonate de sodium ait été ajouté pour peser le bateau « C ».

Tableau 2 : Résultats du test décisif initial

Tableau 3 : Neutralisation d'un acide

1. Énoncez votre hypothèse (développée à l'étape 8) ici. Assurez-vous d'inclure ce que vous pensez que le pH sera, et pourquoi.

2. Qu'est-ce qu'une réaction de neutralisation ?

3. Quand les réactions de neutralisation peuvent-elles être utilisées en laboratoire ?

4. À quel moment l'acide acétique dans la nacelle de pesée « C » a-t-il été neutralisé ?

5. Selon vous, quels auraient été les résultats si une solution plus forte de bicarbonate de sodium avait été utilisée ? Faudrait-il plus ou moins pour neutraliser l'acide ? Qu'en est-il d'une concentration plus faible de bicarbonate de sodium ?

1. Énumérez les numéros atomiques de chacun des éléments suivants.

2. Qu'est-ce qui détermine si une liaison est polaire ?

3. Utilisez le tableau périodique pour déterminer si le chlorure de potassium (KCl) s'est formé par des liaisons covalentes ou ioniques ? Utilisez les preuves de l'introduction pour étayer votre réponse.

4. Recherchez deux molécules polaires communes et deux molécules non polaires communes. Dessinez leur structure moléculaire et expliquez comment la structure rend chaque molécule polaire ou non polaire.

image13.jpgLes encres peuvent être polaires ou non polaires. Les solvants polaires captent les encres polaires, tandis que les solvants non polaires captent les encres non polaires. Dans cette expérience, vous utiliserez des encres pour identifier la boue et le mastic idiot comme polaires ou non polaires. Vous utiliserez également la chromatographie sur papier pour vérifier que les encres sont correctement identifiées comme polaires ou non polaires.

(1) bécher de 250 ml 5 ml de solution de borax à 4 %, marqueur effaçable à sec Na2B4O7·10H2O (1) cylindre gradué de 10 ml (1) cylindre gradué papier filtre (disque) papier filtre (carré) 0,5 g marqueur permanent surligneur gomme de guar 1 bâtonnet de glace

Silly Putty® Ruler Wooden Stir Stick Uni-ball® Roller Pen * Eau distillée ou du robinet * Journal * Papier pour cahier * Ciseaux * Vous devez fournir

1. Peser 0,5 g de gomme de guar dans un bécher de 250 ml.

2. Mesurer 50,0 ml d'eau distillée dans un cylindre gradué de 100 ml et le verser dans le bécher de 250 ml qui contient la gomme de guar.

3. Remuer rapidement le mélange avec un bâtonnet en bois pendant trois minutes, ou jusqu'à ce que la gomme de guar soit dissoute.

4. Mesurer 4,00 ml d'une solution de borax à 4 % dans un cylindre gradué de 10 ml et l'ajouter à la gomme de guar et à l'eau.

5. Remuez la solution jusqu'à ce qu'elle devienne visqueuse. Cela prendra quelques minutes. Si le slime reste trop liquide, ajoutez 1,0 ml supplémentaire de solution de borax à 4,0% et continuez à remuer jusqu'à ce que le slime soit légèrement coulant ou gluant.

6. Une fois que vous êtes satisfait du slime, versez-le dans vos mains. Assurez-vous de ne pas en laisser tomber par terre.

7. Manipulez le slime dans vos mains. Notez les observations faites sur la façon dont la boue coule, s'étire, se brise, etc. dans la partie 1 de la section Données. ATTENTION : La boue est glissante et si elle tombe, elle peut rendre la zone de travail glissante.

8. Remettez le slime dans le bécher et LAVEZ-VOUS LES MAINS.

Partie 2 : Tests d'encre Slime et Putty

1. Sur un morceau de papier pour cahier, faites une marque de 20 à 25 mm de long de chacune des encres que vous testez (marqueur permanent, surligneur, effaçable à sec et stylo à bille Uni-ball®). Espacez les marques d'au moins un pouce d'intervalle. Utilisez un crayon pour étiqueter chaque marque avec sa description.

une. Les encres solubles dans l'eau comprennent celles des surligneurs et de certains stylos.

b. Les encres insolubles dans l'eau comprennent celles des stylos/marqueurs permanents, du papier journal et des marqueurs effaçables à sec.

2. Pendant que les encres sèchent, sélectionnez un passage ou une image dans le journal à tester avec le slime.

3. Développez une hypothèse indiquant si vous pensez que la boue produite dans la partie 1 va absorber l'encre du papier journal. Enregistrez cette hypothèse dans la section Questions post-laboratoire. Ensuite, cassez un petit morceau de bave de 3 – 5 cm de diamètre. Placez délicatement ce morceau sur l'impression du journal, puis ramassez-le soigneusement à nouveau.

4. Observez et notez dans le tableau 1 si l'encre a été absorbée ou non par la boue.

5. Cassez un autre petit morceau de slime. Une fois que les encres de l'étape 1 ont séché, placez délicatement le slime au-dessus du premier endroit sur le papier du bloc-notes, puis ramassez-le avec précaution. Répétez cette opération pour chacune des encres. Observez et notez quelles encres ont été captées (dissoutes) par la boue dans le tableau 1.

6. Répétez ce test d'encre deux fois de plus pour plus de précision.

7. Faites une hypothèse sur les encres que le mastic idiot reprendra dans la partie 2 de la section Données. Ensuite, effectuez les tests d'encre avec le Silly Putty® selon la procédure décrite dans les étapes 5 – 6.

Partie 3 : Chromatographie des échantillons d'encre

Figure 7 : Appareil de chromatographie pour la partie 3 de la procédure.

1. Utilisez un crayon ou des ciseaux pour percer un petit trou au centre d'un morceau de papier filtre (voir Figure 7).

2. Repérez le papier filtre régulièrement espacé d'environ 2 cm du petit trou avec les deux encres insolubles et les deux encres solubles qui ont été utilisées dans la partie 2, étape 1.

3. Procurez-vous un ½ morceau de papier filtre. Pliez le papier en deux plusieurs fois pour qu'il fasse une mèche étroite.

4. Insérez la mèche dans le trou du papier tacheté de manière à ce qu'elle se trouve au-dessus du haut du papier filtre d'environ 2 cm.

5. Remplissez un bécher de 250 mL au d'eau.

6. Placez le papier filtre sur le bécher de sorte que le bas de la mèche soit dans l'eau. Le papier doit dépasser du bord du bécher avec le côté tacheté vers le haut.

7. Laissez l'eau s'écouler jusqu'à ce qu'elle se trouve à environ 1 cm du bord du papier filtre. Retirez le papier filtre du bécher.

8. Observez quelles encres se sont déplacées de l'endroit où elles ont été repérées à l'origine. Notez vos observations dans la partie 3 de la section Données.

Tableau 1 : Résultats des tests d'encre pour Silly Putty®

· Hypothèse pour Silly Putty® (Procédure Partie 2, Étape 7) :

· Observations des encres après chromatographie :

1. Notez ici votre hypothèse concernant la capacité du slime à absorber l'encre du papier journal.

2. La boue a-t-elle absorbé des encres solubles ou insolubles dans l'eau ? De ces résultats, que pouvez-vous conclure sur la polarité des molécules de boue ?

3. Expliquez comment vous avez déterminé votre hypothèse quant à savoir si un mastic stupide absorberait ou non des encres solubles dans l'eau. Votre hypothèse était-elle correcte ?

4. Les encres que vous avez utilisées étaient-elles correctement classées comme solubles et insolubles ? Expliquez votre réponse.

1. La fixation de l'azote est un processus naturel par lequel des formes inertes ou non réactives d'azote sont transformées en azote utilisable. Pourquoi ce processus est-il important pour la vie ?

2. Compte tenu de ce que vous avez appris sur la liaison hydrogène partagée entre les acides nucléiques de l'ADN, quelle paire est la plus stable sous une chaleur croissante : adénine et thymine, ou cytosine et guanine ? Expliquer pourquoi.

3. Lequel des éléments suivants n'est pas une molécule organique méthane (CH4), fructose (C6H12O6), rosane (C20H36) ou ammoniac (NH3) ? Comment savez-vous?

Expérience 1 : Tester les protéines

Les molécules de protéines présentes dans de nombreux aliments fournissent les éléments constitutifs des acides aminés nécessaires à nos propres cellules pour produire de nouvelles protéines. Pour déterminer si un échantillon contient des protéines, un réactif appelé solution de Biuret est utilisé. La solution de Biuret contient des ions cuivre. Cependant, l'état chimique des ions cuivre dans la solution de Biuret les amène à former un complexe chimique avec les liaisons peptidiques entre les acides aminés (lorsqu'ils sont présents), changeant la couleur de la solution. La solution de biuret est normalement bleue, mais vire au rose lorsque des peptides courts sont présents et au violet lorsque des polypeptides longs sont présents.

Figure 6 : Seule la solution de Biuret est située à l'extrême gauche de l'image (bleu). Notez la transition du bleu au violet lorsque des protéines sont ajoutées à la solution, provoquant la transition de la solution du bleu au violet.

(2) béchers de 250 ml 25 gouttes de solution de biuret, H2NC(O)NHC(O)NH (1) sachet de gélatine Knox® 5 ml de solution de glucose à 1 %, C6H12O6 (1) cylindre gradué de 10 ml (1) cylindre gradué de 100 ml permanent Marqueur 5 Pipettes

5 tubes à essai (plastique) Support pour tubes à essai 5 ml de solution inconnue *Eau du robinet *Eau chaude *Blanc d'œuf *Vous devez fournir

1. Étiquetez cinq tubes à essai 1, 2, 3, 4 et 5.

2. Préparez vos échantillons de test comme suit :

une. Mélanger un blanc d'œuf avec 25 ml d'eau dans un bécher de 250 ml pour créer une solution d'albumine. Pipeter 5 ml de cette solution dans le tube à essai 1.

b. Mélanger le sachet de gélatine Knox® avec 50 ml d'eau chaude dans un deuxième bécher de 250 ml. Remuer jusqu'à dissolution. Pipeter 5 ml de cette solution dans le tube à essai 2.

3. Pipeter 5 ml de solution de glucose à 1 % dans le tube à essai 3.

4. Utilisez le cylindre gradué de 10 ml pour mesurer et versez 5 ml d'eau dans le tube à essai 4.

5. Pipeter 5 ml de la « solution inconnue » dans le tube à essai 5.

6. Enregistrez la couleur initiale de chaque échantillon dans le tableau 1.

7. Développez une hypothèse concernant ce que vous prévoyez se passer lorsque la solution de Biuret est ajoutée aux tubes 1 – 4. Enregistrez votre hypothèse dans la section Question post-laboratoire. Ensuite, pipetez cinq gouttes de solution de Biuret dans chaque tube à essai (1 – 5). Agiter chaque tube pour mélanger.

8. Noter la couleur finale dans le tableau 1. Remarque : La protéine est présente dans l'échantillon si une couleur violet clair est observée.

Tableau 1 : Résultats des tests de protéines

1. Notez ici votre hypothèse sur ce qui se passera lorsque la solution de Biuret est mélangée avec les solutions des tubes à essai 1, 2, 3 et 4. Assurez-vous d'utiliser un raisonnement scientifique pour étayer votre hypothèse.

2. Rédigez un énoncé expliquant la composition moléculaire de la solution inconnue sur la base des résultats obtenus lors du test avec chaque réactif.

3. L'alimentation et la nutrition sont étroitement liées à l'étude des biomolécules. Comment devez-vous surveiller votre apport alimentaire pour vous assurer que les cellules de votre corps disposent des matériaux nécessaires pour fonctionner ?

4. La molécule illustrée ci-dessous a produit une couleur bleue lorsqu'elle est testée avec le réactif de Benedict, une couleur jaune lorsqu'elle est testée avec l'IKI et une couleur violette lorsqu'elle est testée avec le réactif Biuret. Sur la base de la structure ci-dessous et de ces résultats chimiques, de quel type de biomolécule s'agit-il ?

1. Un gradient de concentration affecte la direction dans laquelle les solutés diffusent. Décrivez comment les molécules se déplacent par rapport à la concentration.

2. Comment la taille d'un soluté affecte-t-elle la vitesse de diffusion ? Tenez compte de la taille et de la forme d'une molécule dans votre réponse.

3. La polarité affecte-t-elle la diffusion ? Explique ta réponse en utilisant des principes scientifiques.

Expérience 1 : Diffusion à travers un liquide

image15.jpgDans cette expérience, vous observerez l'effet que différents poids moléculaires ont sur la capacité du colorant à traverser un milieu visqueux.

1 bouteille de sirop de maïs de 60 ml, solutions de colorant rouge et bleu C12H22O11 (poids moléculaire bleu = 793 g/mole poids moléculaire rouge = 496 g/mole) (1) boîte de Pétri de 9 cm (moitiés supérieure et inférieure)

Règle * Chronomètre * Ruban * Vous devez fournir

1. Utilisez du ruban adhésif transparent pour fixer une moitié (la moitié inférieure ou la moitié supérieure est fine) de la boîte de Pétri sur une règle. Assurez-vous que vous pouvez lire les marques de mesure sur la règle à travers la boîte de Pétri. Le plat doit être positionné avec l'extrémité ouverte du plat vers le haut.

2. Remplissez soigneusement la moitié de la boîte de Pétri avec du sirop de maïs jusqu'à ce que toute la surface soit couverte.

3. Développez une hypothèse en discutant du colorant qui, selon vous, se diffusera plus rapidement dans le sirop de maïs et pourquoi. Enregistrez-le dans la section Questions post-laboratoire. Ensuite, placez une seule goutte de colorant bleu au milieu du sirop de maïs. Notez la position où le colorant est tombé en lisant l'emplacement du bord extérieur du colorant sur la règle.

4. Enregistrez l'emplacement à l'extérieur du bord du colorant (la distance qu'il a parcourue) toutes les dix secondes pour un total de deux minutes. Enregistrez vos données dans les tableaux 1 et 2.

5. Répétez les étapes 1 – 4 en utilisant le colorant rouge, la seconde moitié de la boîte de Pétri et du sirop de maïs frais.

Tableau 1 : Taux de diffusion dans le sirop de maïs

Tableau 2 : Vitesse de diffusion de différents colorants de poids moléculaire

Distance totale parcourue (mm)

*Multipliez la distance totale diffusée par 30 pour obtenir le taux de diffusion horaire

1. Enregistrez votre hypothèse de l'étape 3 ici. Assurez-vous de valider vos prédictions avec un raisonnement scientifique.

2. Quel colorant s'est diffusé le plus rapidement ?

3. La vitesse de diffusion correspond-elle au poids moléculaire du colorant ?

4. Le taux de diffusion change-t-il avec le temps ? Pourquoi ou pourquoi pas?

5. Examinez le graphique ci-dessous. Correspond-il aux données que vous avez enregistrées dans le tableau 2 ? Expliquez pourquoi ou pourquoi pas. Soumettez votre propre parcelle si nécessaire.

Expérience 2 : Gradients de concentration et perméabilité membranaire

Dans cette expérience, vous dialysez une solution de glucose et d'amidon pour observer :

· Le mouvement directionnel du glucose et de l'amidon.

· L'effet d'une membrane sélectivement perméable sur la diffusion de ces molécules.

image16.jpgUn indicateur est une substance qui change de couleur lorsqu'elle est en présence de la substance qu'elle indique. Dans cette expérience, IKI sera utilisé comme indicateur pour tester la présence d'amidon et de glucose.

(5) béchers de 100 ml 10 ml de solution de glucose à 1 %, C6H12O6 4 bandelettes de test de glucose (1) cylindre gradué de 100 ml 4 ml d'iodure de potassium à 1 %, IKI 5 ml d'amidon liquide, C6H10O5 3 pipettes 4 élastiques (petits contenant du latex , manipuler avec des gants en cas d'allergie)

*Chronomètre *Eau *Ciseaux *Tube de dialyse de 15,0 cm *Vous devez fournir *Assurez-vous de mesurer et de couper uniquement la longueur dont vous avez besoin pour cette expérience. Réservez le reste pour des expériences ultérieures.

Ne laissez pas l'extrémité ouverte du tube de dialyse tomber dans le bécher. Si c'est le cas, retirez le tube et rincez abondamment à l'eau avant de remplir à nouveau avec une solution d'amidon/glucose et de le remettre dans le bécher.

· La tubulure de dialyse peut être rincée et réutilisée en cas d'erreur.

· Le tube de dialyse doit être trempé dans l'eau avant de pouvoir l'ouvrir pour créer le “bag”. Suivez les instructions pour l'expérience, en commençant par tremper le tube dans un bécher d'eau. Ensuite, placez le tube de dialyse entre votre pouce et votre index et frottez les deux doigts ensemble de manière à cisailler. Cela devrait ouvrir le “tube” afin que vous puissiez le remplir avec les différentes solutions.

1. Mesurer et verser 50 ml d'eau dans un bécher de 100 ml. Couper un morceau de tube de dialyse de 15,0 cm de long. Immerger le tube de dialyse dans l'eau pendant au moins 10 minutes.

2. Mesurer et verser 82 ml d'eau dans un deuxième bécher de 100 ml. Il s'agit du bécher dans lequel vous mettrez la poche de dialyse remplie à l'étape 9.

3. Pendant que la poche de dialyse trempe encore, préparez le mélange glucose/saccharose. Utilisez une pipette graduée pour ajouter cinq ml de solution de glucose dans un troisième bécher et étiquetez-le « solution de sac de dialyse ». Utilisez une autre pipette graduée pour ajouter cinq ml de solution d'amidon dans le même bécher. Mélanger en pipetant la solution de haut en bas de la pipette six fois.

4. À l'aide de la même pipette que vous avez utilisée pour mélanger la solution du sac de dialyse, prélevez deux ml de cette solution et placez-la dans un bécher propre. Cet échantillon servira de contrôle positif pour le glucose et l'amidon.

une. Trempez l'une des bandelettes de test de glucose dans les deux ml de solution de glucose/amidon dans le troisième bécher. Après une minute, notez la couleur finale de la bandelette de test de glucose dans le tableau 3. Il s'agit de votre contrôle positif pour le glucose.

b. Utilisez une pipette pour transférer environ 0,5 ml d'IKI dans les deux ml de solution de glucose/amidon dans le troisième bécher. Après une minute, notez la couleur finale de la solution de glucose/amidon dans le bécher dans le tableau 3. Ceci est votre contrôle positif pour l'amidon.

5. À l'aide d'une pipette propre, prélevez deux ml d'eau des 82 ml d'eau que vous avez placés dans un bécher à l'étape 2 et placez-les dans un bécher propre. Cet échantillon servira de contrôle négatif pour le glucose et l'amidon.

une. Trempez l'une des bandelettes de test de glucose dans les deux ml d'eau du bécher. Après une minute, notez la couleur finale de la bandelette de test de glucose dans le tableau 3. Il s'agit de votre contrôle négatif pour le glucose.

b. Utilisez une pipette pour transférer environ 0,5 ml d'IKI dans les deux ml d'eau dans le bécher. Après une minute, notez la couleur finale de l'eau dans le bécher dans le tableau 3. Ceci est votre contrôle négatif pour l'amidon.

Remarque : Les résultats de couleur de ces contrôles déterminent la clé du réactif indicateur. Vous devez utiliser ces résultats pour interpréter le reste de vos résultats.

6. Après au moins 10 minutes, retirer le tube de dialyse et fermer une extrémité en pliant sur 3,0 cm d'une extrémité (en bas). Pliez-le à nouveau et fixez-le avec un élastique (utilisez deux élastiques si nécessaire).

7. Assurez-vous que l'extrémité fermée ne permettra pas à une solution de s'échapper. Vous pouvez tester cela en séchant l'extérieur du sac de dialyse avec un chiffon ou une serviette en papier, en ajoutant une petite quantité d'eau dans le sac et en examinant le joint élastique pour détecter les fuites. Assurez-vous de retirer l'eau de l'intérieur du sac avant de continuer.

8. À l'aide de la même pipette que celle utilisée pour mélanger la solution à l'étape 3, transférez huit ml de la solution du bécher de solution de la poche de dialyse dans la poche de dialyse préparée.

Figure 4 : Référence de l'étape 9.

9. Placer le tube de dialyse rempli dans un bécher rempli de 80 ml d'eau avec l'extrémité ouverte drapée sur le bord du bécher comme illustré à la figure 4.

10. Laissez la solution reposer pendant 60 minutes. Nettoyez et séchez tous les matériaux à l'exception du bécher avec le sac de dialyse.

11. Après que la solution ait diffusé pendant 60 minutes, retirez le tube de dialyse du bécher et videz le contenu dans un bécher propre et sec. Étiquetez-le solution de sac de dialyse.

12. Testez la solution du sac de dialyse pour la présence de glucose et d'amidon. Testez la présence de glucose en plongeant directement une bandelette de test de glucose dans le sac de dialyse. Encore une fois, attendez une minute avant de lire les résultats des bandelettes de test. Enregistrez vos résultats pour la présence de glucose et d'amidon dans le tableau 4. Testez la présence d'amidon en ajoutant deux ml d'IKI. Enregistrez la couleur finale dans le tableau 4 après qu'une minute se soit écoulée.

13. Testez la solution dans le bécher pour le glucose et l'amidon. Utilisez une pipette pour transférer huit ml de la solution dans le bécher dans un bécher propre. Testez la présence de glucose en plongeant une bandelette de test de glucose dans le bécher. Attendez une minute avant de lire les résultats de la bandelette réactive et notez les résultats dans le tableau 4. Ajoutez deux ml d'IKI à l'eau du bécher et notez la couleur finale de la solution du bécher dans le tableau 4.

Tableau 3 : Données du réactif indicateur

Contrôle Positif Amidon (Couleur)

Amidon Contrôle Négatif (Couleur)

Contrôle Positif Glucose (Couleur)

Contrôle Négatif Glucose (Couleur)

Tableau 4 : Diffusion de l'amidon et du glucose au fil du temps

Sac de dialyse après 1 heure

Eau du bécher après 1 heure

1. Pourquoi est-il nécessaire d'avoir des contrôles positifs et négatifs dans cette expérience ?

2. Dessinez un schéma du montage expérimental. Utilisez des flèches pour décrire le mouvement de chaque substance dans le sac de dialyse et le bécher.

3. Quelle(s) substance(s) a traversé la membrane de dialyse ? Soutenez votre réponse avec des preuves basées sur des données.

4. Quelles molécules sont restées à l'intérieur de la poche de dialyse ?

5. Est-ce que toutes les molécules ont diffusé hors du sac dans le bécher ? Pourquoi ou pourquoi pas?


La variante Delta COVID-19 est désormais la deuxième plus dominante à New York

L'Institut de virologie de Wuhan a reçu des centaines de milliers de dollars de plus en subventions fédérales que le conseiller médical en chef de la Maison Blanche, le Dr Anthony Fauci, a indiqué aux législateurs la semaine dernière, selon des courriels récemment publiés.

Les messages, obtenus par le groupe de surveillance conservateur Judicial Watch, montrent que l'Institut national des allergies et des maladies infectieuses (NIAID) a alloué 826 277 $ au laboratoire sur une période de six ans se terminant en 2019 via l'organisme à but non lucratif EcoHealth basé à New York. Alliance.

Mais Fauci, le directeur de longue date du NIAID, a déclaré à un sous-comité des crédits de la Chambre le 25 mai que l'engagement de financement "était d'environ 600 000 $ sur une période de cinq ans, donc c'était un montant modeste".

Le financement américain du laboratoire a fait l'objet d'un examen minutieux au milieu de la controverse en cours sur la fuite du coronavirus du centre de recherche vers la ville de Wuhan, forte de 11 millions d'habitants, déclenchant la pire pandémie mondiale depuis un siècle.

Selon un graphique inclus dans l'un des e-mails, l'Institut de virologie de Wuhan a reçu 133 595 $ au cours de l'exercice 2014 et 139 015 $ au cours de l'exercice 2015. Au cours des trois années suivantes, le laboratoire a reçu 159 122 $ avant que le financement ne soit ramené à 76 301 $ au cours de l'exercice 2019 .

Tous les yeux sont rivés sur l'Institut de virologie de Wuhan à Wuhan, en Chine, alors que la source du coronavirus fait l'objet d'une enquête. AFP via Getty Images

Un e-mail du 13 avril 2020 du Dr Emily Erbelding, responsable du NIAID, indique que le financement de 2019 pour le laboratoire de Wuhan était le premier versement d'une nouvelle subvention à EcoHealth qui aurait rapporté à l'installation environ 750 000 $ sur un total de six ans, en plus des presque 750 000 $ qu'il a reçus entre les exercices 2014 et 2018.

Entre les exercices 2014 et 2019, EcoHealth a reçu environ 3,75 millions de dollars de subventions pour mener à bien son étude intitulée « Comprendre le risque d'urgence liée au coronavirus des chauves-souris ».


AP Biologie - V. Chaumont

Instructions : Cliquer sur le nom de la section affichera / masquera la section.

LA SEMAINE EN UN COUP D'IL

20/21 INITIATION AU COURS

20/21 ÉCOLOGIE

Comportement animal (8/24 & 8/25)

Conception expérimentale (8/26 & 8/27)

Comportement animal PRE-LAB (8/28 & 8/31)

Vidéos de laboratoire sur le comportement animal et analyse post-laboratoire (9/1 & 9/2)

Devoirs facultatifs pour l'écologie DUE 21 SEPT

Analyse du Chi carré (9/3 & 9/4)

Écologie des populations (9/8 & 9/9)

Écologie communautaire (9/10 & 9/11)

Complétez les devoirs suivants dans l'ordre

Modèle de réseau alimentaire (lundi, 9/14)

Effectuez les tâches suivantes dans l'ordre :

Pratique de mathématiques écologiques, mardi 15 septembre

Quiz, impact humain et cycles dans la nature (mercredi 9/16)

Aujourd'hui : Complétez le quiz, regardez les deux vidéos ci-dessous sur Edpuzzle tout en remplissant la feuille de travail.

Objectifs écologiques et vidéo CRAM (jeudi 9/17)

Critique du jeu (ven. 9/18)

Journée de pratique FRQ, (lundi 21/09/21)

EXAMEN À RÉPONSE GRATUITE D'ÉCOLOGIE (mars 9/22)

CLASSEMENT FRQ (Mer 9/23)

EXAMEN À CHOIX MULTIPLE D'ÉCOLOGIE (jeudi 24/9)

Journée de rattrapage (vendredi 25/9)

Analyser, défier, corriger le test écologique (lundi 28/9)

Mademoiselle Chaumont a votre code (qui se trouve dans le coin supérieur droit de chaque diapositive). N'oubliez pas que vous avez deux diapositives à regarder (une pour chaque question).

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20/21 BIOCHIMIE

MARDI 29/9 : (Propriétés de l'Eau et Vocab BioChem)

• Devoirs de vocabulaire par classe

MERCREDI 9/30 : (Propriétés des mini-laboratoires de l'eau et vidéo)

Suivez les instructions sur la feuille ci-dessous et collez-les dans votre cahier numérique après vos notes sur les propriétés de l'eau dans la table des matières de biochimie.

JEUDI 10/1 : (Introduction aux Biomolécules)

Aujourd'hui, nous prenons des notes sur les molécules qui composent la masse sèche des êtres vivants. Si le temps passe après les notes, terminez les activités aquatiques de la veille ou travaillez votre vocabulaire pour la semaine prochaine.

VENDREDI 02/10 : (Revue de Biomolécules)

Votre devoir d'aujourd'hui est sur Google Classroom. Complétez et rendez-vous pour une note avant 16 heures le lundi 10/5.

LUNDI 10/5 (Notes protéinées)

Aujourd'hui, les élèves prendront des notes sur la structure des protéines.

MARDI 10/6 (Structure des protéines et devoirs facultatifs)

Aujourd'hui, les élèves se verront proposer des devoirs facultatifs pour cette unité. Ensuite, les élèves effectueront une activité de révision sur les quatre degrés de structure protéique.

DEVOIRS OPTIONNELS :

Edpuzzle | Molécules biologiques - Vous êtes ce que vous mangez : cours accéléré Biologie #3 Outil externe

MERCREDI 10/7 (Quiz et notes sur les enzymes)

Aujourd'hui, assurez-vous de répondre au quiz ci-dessous ET PUIS prenez des notes sur Enzymes. Ces deux éléments doivent être terminés aujourd'hui.

Edpuzzle | 2021 ENREGISTRÉ Conférence Enzyme Outil externe

JEUDI 10/8 - MARDI 10/13 (Laboratoire de taux de réaction de l'enzyme catalase)

Les étudiants effectueront le pré-laboratoire, la collecte de données et l'analyse post-laboratoire pour le laboratoire de taux de réaction enzymatique de la catalase. Vous trouverez ci-dessous les liens et les documents pour chaque partie du laboratoire. L'ensemble du laboratoire est attendu pour 23h59 le jeudi 15 octobre. C'EST UNE NOTE SOMMATIVE.

• Portion pré-laboratoire :

• Collecte de données :

• Portion Post-Lab :

JEUDI 10/15 (Notes Glucides et Lipides)

Aujourd'hui, les élèves prendront des notes sur les glucides et les lipides. Les étudiants auront également accès au guide d'étude de la biochimie et à la vidéo CRAM.

VENDREDI 10/16 (Acide nucléique)

Aujourd'hui, les étudiants prendront des notes sur les acides nucléiques, puis rempliront un test de compréhension du formulaire google.

LUNDI 10/19 (Biochimie Vocab Bingo)

MARDI 10/20 (Auto-évaluation des objectifs de biochimie et jeu de révision Kahoot)

MERCREDI 21/10 (Révision pour test)

Choses à faire aujourd'hui:

1. Assurez-vous que votre COT de biochimie est à jour.

2. Complétez le CRAM (prenez des notes et rendez-vous pour un crédit supplémentaire)

3. Remplissez les devoirs facultatifs dus vendredi pour un crédit supplémentaire.

JEUDI 22/10 (Partie FRQ de l'examen de biochimie)

VENDREDI 23/10 (Classement FRQ)

Lisez les diapositives 1 à 6 du diaporama de l'évaluateur de votre classe. Sur la diapositive 7, choisissez les diapositives que vous souhaitez noter.

LUNDI 26/10 (Partie à choix multiples de l'examen de biochimie)

MARDI 10/27 (Examen de passage)

Aujourd'hui, les élèves examineront leurs notes aux tests. Toute personne qui a raté une partie de l'examen le passera aujourd'hui. Les étudiants auront la possibilité de corriger et de refaire si leur note est inférieure à 80. De plus, les étudiants documenteront leur note sur leur page Objectifs de biochimie.

20/21 STRUCTURE ET FONCTIONNEMENT DES CELLULES

MERCREDI 28/10 (Procaryotes vs Eucaryotes)

Aujourd'hui, les étudiants liront la section 6.2 du chapitre, regarderont une courte vidéo sur les deux types de cellules et rempliront la feuille de travail procaryote vs eucaryote.

Mettez la feuille de travail procaryote vs eucaryote dans votre cahier numérique. Ce sera votre première entrée dans la table des matières des cellules après les objectifs des cellules.

ENSUITE, les élèves doivent contribuer UN fait à leur diagramme collaboratif de classe.

JEUDI 29/10 (Examinez le diagramme de collaboration de la classe, les notes de la visite de la cellule)

Tout d'abord, les étudiants doivent examiner les faits saisis par leurs pairs sur le diagramme de Venn collaboratif de la classe d'hier, en comparant et en contrastant les cellules procaryotes et les cellules eucaryotes.

Si un élève voit quelque chose avec lequel il n'est pas d'accord, il doit surligner l'énoncé en jaune.

Ensuite, nous prendrons des notes sur le système endomembranaire (Tour of the Cell).

VENDREDI 10/30 (Terminer la visite des notes de la cellule et terminer le travail sur la membrane plasmatique)

Tout d'abord, les étudiants doivent terminer la visite des notes de la cellule (autres organites).

Ensuite, les élèves regarderont 3 courtes vidéos sur la structure de la membrane plasmique.

Ensuite, les étudiants rempliront la feuille de travail sur la membrane plasma.

* Les feuilles de travail du mercredi et du vendredi seront notées à partir du cahier numérique le mercredi 11/4

MERCREDI 11/4 (Tutoriel sur la taille des cellules et mini-laboratoire)

Aujourd'hui, les étudiants termineront le didacticiel sur la taille des cellules et le mini-laboratoire. Il existe des liens vers toutes les vidéos et présentations nécessaires dans le didacticiel sur la taille des cellules et la feuille de laboratoire, mais j'ai également les différents liens ici individuellement.

Je noterai ce didacticiel et ce mini-laboratoire à partir de votre cahier numérique vendredi.

JEUDI 11/5 (Notes Transport et Osmose)

Aujourd'hui, les étudiants s'assureront de pouvoir accéder à l'application Gizmo. Ensuite, nous discuterons des nouveaux devoirs facultatifs disponibles. Ensuite, nous prendrons des notes sur le transport à travers la membrane plasmique.

DEVOIRS OPTIONNELS :

VENDREDI 11/6 (Osmosis Lab : Symptômes et manuel AP)

Tout d'abord, les étudiants doivent consulter le manuel Symptômes et AP pour leur laboratoire d'osmose (les diapositives d'instructions décrivent ce que vous devez compléter aujourd'hui).

Ensuite, les étudiants doivent remplir le formulaire Google « Vérifier la compréhension ».

LUNDI 11/9 (Potentiel hydrique)

MARDI 11/10 (Interphase et réplication de l'ADN)

MERCREDI 11/11 (Cell Quiz et Travail sur Osmosis Gizmo Lab)

Tout d'abord, les étudiants doivent terminer leurs notes d'hier s'ils ne l'ont pas fait en classe (la plupart des classes étaient à la dernière partie de la relecture des notes). Ensuite, faites le Quiz Cellulaire avant MINUIT ce soir. Enfin, complétez la partie LAB DATA du laboratoire d'osmose sur Gizmo (Collect - Event Sequence). Si vous voulez travailler à l'avance, n'hésitez pas.

Vous avez trente minutes pour compléter le quiz et il doit être terminé avant 23h59 le 11/11/20.

Vous avez trente minutes pour compléter le quiz et il doit être terminé avant 23h59 le 11/11/20.

REVUE DE TEST DE CELLULES

VENDREDI 11/13 (Mitose et Cytokinèse)

Les élèves prendront des notes sur la mitose et la cytokinèse, puis compléteront la « Vérification de la compréhension ».

LUNDI 11/16 (Règlement du cycle cellulaire)

Les étudiants prendront des notes sur la régulation du cycle cellulaire et mettront en pratique leurs connaissances avec l'activité de régulation du cycle cellulaire.

MARDI 11/17 (Pratique FRQ et graphique)

Suivez les instructions d'aujourd'hui pour prendre des notes pendant que vous lisez le récit de la longue question à développement. Terminez l'essai 1 et l'essai court 2 d'ici le mercredi. à minuit.

MERCREDI 18/11 (Terminer les FRQ d'hier et réviser pour le test MC Cells)

Les étudiants doivent compléter ce qui suit aujourd'hui:

1. Terminez les essais FRQ longs et courts sur les diapositives Google Classroom (transformez-vous en google class lorsque vous avez terminé).

2. Jouez au jeu de révision

3. Auto-évaluez-vous en passant par vos objectifs de cellules dans votre cahier numérique. VEUILLEZ NOTER - La théorie endosymbiotique a été déplacée de cette unité vers Evolution, donc on ne vous posera pas de questions sur cet objectif.

Suivez les instructions d'hier pour prendre des notes pendant que vous lisez le récit de la longue question à développement. Terminez l'essai 1 et l'essai court 2 d'ici le mercredi. à minuit.

JEUDI 19/11 (Test des Cellules)

20/21 ÉNERGÉTIQUE CELLULAIRE

LUNDI 30/11 (Intro à l'énergie)

1. Répondez aux questions de sonneur d'aujourd'hui sur la feuille de sonneur dans Google Classroom. (Les questions sont sur la première diapositive de la conférence PPT).

2. Nous prendrons des notes sur Intro to Energy

3. Les élèves réviseront leurs tests de cellules et commenceront les corrections si nécessaire.

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MARDI 12/1 (Réactions dépendantes de la lumière de la photosynthèse)

1. Répondez aux questions de sonneur d'aujourd'hui sur la feuille de sonneur dans Google Classroom. (Les questions sont sur la première diapositive de la conférence PPT).

2. Nous prendrons des notes sur les réactions dépendantes de la lumière

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MERCREDI 12/2 (Vidéo et projet sur les réactions dépendantes de la lumière)

1. Tout d'abord, l'étudiant doit compléter la vidéo et les questions Edpuzzle.

2. Ensuite, l'étudiant doit relire les instructions pour le projet d'aventure dépendant de la lumière

3. Enfin, l'étudiant doit remplir le formulaire Google afin que je puisse vérifier sa compréhension.

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JEUDI 12/3 (Projet de réactions dépendantes de la lumière)

1. Tout d'abord, Mlle C passera en revue les questions du devoir d'hier.

2. Ensuite, les étudiants auront le temps de travailler sur leur projet (dû mercredi prochain)

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VENDREDI 12/4 (Le cycle de Calvin - la deuxième partie de la photosynthèse)

1. Tout d'abord, les étudiants auront un sonneur pour répondre à partir de la conférence enregistrée (à remplir sur la troisième case de votre feuille de sonneur).

2. Complétez les notes hors d'Edpuzzle (options de la page de notes ci-dessous).

3. Lorsque vous avez terminé avec les notes, remplissez le formulaire Check for Understanding Google.

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LUNDI 12/7 (Laboratoire de photosynthèse)

1. Tout d'abord, nous allons passer en revue les questions de la conférence du cycle de Calvin.

2. Ensuite, Mme C présentera le laboratoire de photosynthèse.

3. Les étudiants commenceront à travailler sur leur laboratoire (le pré-labo, la collecte de données et le post-labo sont attendus dans Google Classroom le vendredi 12/11).

Choisissez UN groupe expérimental (feuille violette ou lumière augmentée) :

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MARDI 12/8 (Respiration Cellulaire Aérobie)

1. Tout d'abord, les élèves répondront aux quatre premières questions de leur guide d'étude.

2. Ensuite, nous prendrons des notes sur la respiration cellulaire aérobie.

3. Nouveaux devoirs facultatifs disponibles ci-dessous (à remettre le jeudi 17/12/)

Devoirs facultatifs (à remettre le jeudi 17/12/) :

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MERCREDI 12/9 (Quiz sur la photosynthèse et projet de fin)

1. Tout d'abord, remplissez le quiz ci-dessous

2. Terminez le projet Light Dependent Adventure et partagez-le avec Mme Chaumont

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JEUDI 12/10 (Travail sur le laboratoire de photosynthèse)

1. Tout d'abord, les étudiants répondront aux cinq premières questions sous Respiration cellulaire sur leur guide d'étude

2. Les étudiants qui ont répondu au quiz d'hier peuvent vérifier leurs notes/réponses ET les étudiants qui n'ont pas répondu au quiz le feront maintenant

3. Les étudiants ont le temps de travailler sur leur laboratoire de photosynthèse

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VENDREDI 12/11 (Respiration Anaérobie - Fermentation)

1. Tout d'abord, les élèves complèteront un sonneur de cloches sur la relation entre la photosynthèse et la respiration cellulaire.

2. Ensuite, les élèves doivent remettre leur feuille de sonneur à Google Classroom

3. Ensuite, les élèves doivent prendre des notes sur la respiration anaérobie/la fermentation

4. Enfin, les élèves doivent remplir le test de compréhension.

5. ASSUREZ-VOUS DE METTRE VOTRE LABORATOIRE DE PHOTOSYNTHÈSE AVANT MINUIT À LA CLASSE GOOGLE !

Besoin de plus de tutoriels sur la respiration cellulaire ?

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LUNDI 12/14 (Revue)

1. Tout d'abord, Mme C répondra aux questions de la leçon de fermentation de vendredi.

2. Ensuite, les élèves travaillent sur le matériel de révision pour le test de demain (jeu de révision, guide d'étude, vidéo CRAM)

3. Les étudiants qui manquent un travail ou qui doivent compléter un crédit supplémentaire se verront accorder cette fois-ci pour le faire

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MARDI 12/15 (Test énergétique)

- 20 questions MC

- 1 essai court avec les parties A et B. 'A' a reçu une réponse techniquement correcte, mais ne recevrait pas de points avec la façon dont il est assemblé. C'est à vous de le réparer, pour que des points soient donnés. La partie « B » est pour vous de répondre normalement.

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MERCREDI 12/16 (Rattrapage et test des corrections)

-Si vous n'avez pas passé le test d'hier, vous devez venir en classe ou si vous êtes éloigné, zoomez.

-Si vous avez passé le test d'hier, regardez ce que vous avez manqué.

  • Si vous avez manqué 6 questions ou plus, complétez les corrections du test (correctez seulement 6 questions).La feuille de corrections est ci-dessous.
  • Votre question FRQ peut être notée ou non au moment où vous regardez votre test (je les note aujourd'hui)

-VÉRIFIEZ VOS NOTES ! Surtout si vous échouez, assurez-vous de rendre votre travail manquant.

Devoirs facultatifs (à remettre le jeudi 17/12/) :

20/21 EXPRESSION ET RÉGULATION DES GÈNES

MERCREDI 1/6 (Examen de la structure de l'ADN et de l'emballage des chromosomes)

1. Complétez la sonnerie sur votre page de notes pour aujourd'hui.

2. Nous passerons en revue la structure de l'ADN et discuterons de la façon dont l'ADN est emballé à l'intérieur de la cellule.

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JEUDI 1/7 (TRANSCRIPTION ARN)

1. Complétez la sonnerie sur votre page de notes pour aujourd'hui.

2. Aujourd'hui, nous allons commencer l'expression génique en discutant de la transcription.

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VENDREDI 1/8 (EPIGENETIQUE)

1. Regardez la vidéo et répondez aux questions sur Edpuzzle

2. Facultatif : vous pouvez également remplir la page de questions pour prendre des notes pendant que vous regardez la vidéo et la retourner (la partager avec moi) pour un crédit supplémentaire.

A DONNER AVANT LA CLASSE DE LUNDI !

(Si le lien ci-dessus ne fonctionne pas pour regarder la vidéo, essayez celui-ci)

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LUNDI 1/11 (TRADUCTION)

1. Tout d'abord, les étudiants compléteront un sonneur sur les modifications post-transcriptionnelles

2. Ensuite, je passerai en revue les questions de la vidéo sur l'épigénétique de vendredi

3. Nous discuterons et prendrons des notes sur la traduction (si nous ne la terminons pas aujourd'hui, nous le ferons demain).

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MARDI 1/12 (TRADUCTION)

1. Tout d'abord, nous allons terminer nos notes de traduction d'hier

2. Ensuite, les étudiants effectueront une simulation Gizmo

- Doit être connecté au compte NISD

- Doit utiliser le portail pour accéder à l'application Gizmo

- Si vous utilisez votre propre appareil (pas un Chromebook), vous devez utiliser le navigateur Web Chrome (pas FireFox ou Safari)

3. Enfin, remplissez la feuille de travail sur l'expression génétique dans Google Classroom.

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MERCREDI 1/13 (RÉVISION ET QUIZ)

1. Tout d'abord, complétez l'examen interactif ci-dessous.

2. Répondez au questionnaire sur l'expression génétique AUJOURD'HUI.

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JEUDI 1/14 & VENDREDI 1/15 (Règlement génique pour les cellules Euk. et Prok.)

1. Complétez l'allégorie de la sonnerie.

2. Ensuite, prenez des notes sur la régulation des gènes eucaryotes vs procaryotes

3. Ensuite, remplissez la feuille de travail sur la régulation des gènes procaryotes sur Google Classroom

4. DEVOIR FACULTATIF : Créez votre propre allégorie unique sur la transcription et la traduction (instructions sur la 2e page de Bellringer)

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MARDI 1/19 (Notes de Mutation)

1. Remplir la section ADN et ARN du Guide d'étude, questions 1-5.

2. Ensuite, nous prendrons des notes sur les mutations

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MERCREDI 1/20 (Pratique de la Mutation)

1. Remplir la section TRANSCRIPTION du guide d'étude, questions 1-9.

2. Ensuite, remplissez la feuille de pratique sur les mutations interactives sur Google Classroom et rendez-vous. Utilisez les notes d'hier si nécessaire.

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JEUDI 1/21 (Protein Synthesis Gizmo Lab)

1. Remplir la section TRADUCTION du guide d'étude, questions 1-6.

2. Ensuite, les étudiants commenceront le laboratoire de Gizmo sommatif de synthèse de protéines. Ce sera une note sommative. Diapositives d'introduction pour le début du cours ci-dessous.

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VENDREDI 1/22 (Laboratoire de synthèse de protéines)

1. Terminez le laboratoire de Gizmo sommatif de synthèse de protéines. Ce sera une note sommative. Les diapositives d'introduction d'hier sont ci-dessous.

2. Disponible ci-dessous : la vidéo CRAM du guide d'étude Gene Expression.

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LUNDI 1/25 (Review Game)

1. Aujourd'hui, nous allons jouer à un jeu de révision de Kahoot.

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MARDI 1/26 (PORTION EXAMEN FRQ)

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MERCREDI 1/27 (GRADE FRQ)

Aujourd'hui, les élèves noteront un FRQ anonyme. La notation fera également partie de la note FRQ du correcteur. Noter dans les limites du raisonnable, donner des commentaires.

Lisez les instructions sur la diapositive 1 et les devoirs de notation sont sur la diapositive 6.

  • Vous appartenez à 1ère période
  • L'activité EXAMEN FRQ 1RE PÉRIODE est marqué comme terminé
  • Vous appartenez à 2e période
  • L'activité EXAMEN FRQ 2E PÉRIODE est marqué comme terminé
  • Vous appartenez à 5e période
  • L'activité EXAMEN FRQ 5E PÉRIODE est marqué comme terminé
  • Vous appartenez à 6e période
  • L'activité EXAMEN FRQ 6E PÉRIODE est marqué comme terminé
  • Vous appartenez à 7e période
  • L'activité EXAMEN FRQ 7E PÉRIODE est marqué comme terminé
  • Vous appartenez à 8e période
  • L'activité EXAMEN FRQ 8E PÉRIODE est marqué comme terminé

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JEUDI 1/28 (PARTITION DE L'EXAMEN MC)

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20/21 BIOTECHNOLOGIE, VIRUS, COMMUNICATION CELLULAIRE

VENDREDI 1/29 (ARTICLE CRISPR)

1. Lisez l'article CRISPR et l'épissure pour survivre. Ceci est lié à l'unité que nous commençons la semaine prochaine, la biotechnologie.

2. Répondez à la feuille de questions et de réflexion sur l'article CRISPR pendant que vous lisez ou juste après avoir lu l'article.

3. Remettez la feuille de questions dans Google Classroom lorsque vous avez terminé. Ceci est dû avant le début des cours le mardi 2/2

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MARDI 2/2 (Enzymes de restriction et électrophorèse sur gel)

1. Tout d'abord, nous prendrons des notes sur les enzymes de restriction et comment elles sont utilisées dans l'électrophorèse sur gel

2. Ensuite, les élèves auront le temps de parcourir l'ensemble de la note du test et de remettre en question leurs FRQ, au besoin.

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MERCREDI 2/3 (Laboratoire virtuel d'électrophorèse sur gel)

1. Accédez à Google Classroom pour obtenir la fiche du laboratoire virtuel d'électrophorèse sur gel

2. Pendant que vous terminez le laboratoire virtuel, répondez aux questions sur la feuille et rendez-vous.

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JEUDI 2/4 (Activité enzymatique de restriction)

1. Accédez à Google Classroom pour obtenir l'activité enzymatique de restriction

2. Si vous n'étiez pas en classe aujourd'hui, j'ai enregistré une vidéo de « mise en route » pour aider les élèves à commencer le devoir.

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VENDREDI 2/5 (La réalité de l'édition de gènes)

1. Allez sur Edpuzzle et regardez/répondez aux questions sur la vidéo The Reality of Gene Editing

2. Les questions qui vous seront posées sont liées ci-dessous pour vous aider à vous préparer pendant que vous regardez.

3. Assurez-vous d'avoir terminé et rendu le devoir de gel virtuel (à partir de mercredi)

4. Assurez-vous que l'activité de restriction enzymatique est terminée et activée (d'hier)

5. Consultez vos FRQ pour vérifier/contester votre score et vos commentaires (liens vers les diapositives FRQ ci-dessus sous la date de mardi 2/2

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LUNDI 2/8 (Conférence sur le génie génétique)

1. Tout d'abord, les élèves répondront aux questions du sonneur sur la page des notes.

2. Ensuite, nous discuterons de la PCR, du clonage de gènes et des types de génie génétique

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MARDI 2/9 (Gizmo de génie génétique)

1. Tout d'abord, nous passerons en revue les questions de la vidéo d'édition de gènes vendredi

2. Ensuite, les étudiants effectueront les tâches 1 à 3 sur le Gizmo de génie génétique

**NOUVEAU DEVOIRS OPTIONNELS DISPONIBLES, DATE DU 2/19**

- Lecture guidée par les virus

-Fiche de travail sur la biotechnologie

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MERCREDI 2/10 (Quiz Biotechnologie)

1. Si vous êtes présent pour vos autres cours, vous devez répondre au quiz avant 23h59 ce soir ou les points de retard seront déduits.

2. Vérifiez vos notes pour vous assurer que tout votre travail a été rendu.

3. Compléter les devoirs facultatifs assignés le mardi 2/9

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JEUDI 2/11 (Journée de rattrapage)

1. Vérifiez vos notes dans HAC - corrigez les manques que vous avez

2. Vous avez des devoirs facultatifs sur lesquels vous pouvez travailler (sous la date du mardi 2/9)

3. Vérifiez votre quiz d'hier - regardez ce que vous avez manqué et les bonnes réponses. S'il y en a que vous ne comprenez pas, faites le moi savoir !

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VENDREDI 2/12 (VIRUS BASICS)

1. Prenez des notes sur les notes de base sur la structure et les fonctions du virus

2. Complétez la carte de comparaison en utilisant vos notes

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MARDI 23/02 (CLASSIFICATION ET ÉVOLUTION DES VIRUS)

1. Répondez aux deux questions de révision du sonneur de cloches.

2. Notes complètes sur la classification virale et l'évolution.

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MERCREDI 24/02 (DOCUMENTAIRE VIRUS)

1. Choisissez UN des documentaires suivants à regarder.

2. Remplissez la feuille de réflexion sur la classe Google et rendez-vous.

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JEUDI 25/02 (MÉCANISMES DE RETOUR)

1. Accédez à Google Classroom et complétez le paragraphe Vérifier la compréhension.

2. Remplissez les notes sur les mécanismes de rétroaction.

3. Les étudiants recevront aujourd'hui un guide d'étude pour les aider à se préparer au test du 9 mars

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VENDREDI 2/26 (SIGNALISATION CELLULAIRE)

1. Accédez à Edpuzzle et complétez la vidéo et les questions sur la signalisation cellulaire (

2. Remplissez le Google Form Check for Understanding, en examinant la leçon d'hier sur les mécanismes de rétroaction positifs et négatifs.

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LUNDI 3/1 (SIGNALISATION CELLULAIRE)

1. Tout d'abord, les étudiants recevront un guide d'étude pour cette unité (Rappelez-vous, ce guide d'étude peut être utilisé lors du test de la semaine prochaine)

2. Ensuite, nous prendrons des notes sur la communication cellulaire et la transduction de la signalisation

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MARDI 3/2 (PROJET DE COMMUNICATION CELLULAIRE)

1. Lisez les instructions du projet et regardez l'exemple.

2. Faites tourner la roue pour le sujet de votre projet.

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JEUDI 3/4 (REVUE DU JEU)

1. Aujourd'hui, nous allons jouer à un jeu de révision pour préparer le test de mardi prochain

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VENDREDI 3/5 (TRAVAIL SUR PROJET/LOOK OVER CRAM)

1. Aujourd'hui, les étudiants ont le temps de travailler sur leur projet de communication cellulaire sommative

2. Des vidéos CRAM pour chaque partie du guide d'étude sont également ci-dessous pour vérifier votre travail.

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MARDI 3/9 (JOUR D'EXAMEN)

1. Aujourd'hui, les étudiants passeront l'examen sur la biotechnologie, les virus et la communication cellulaire

2. Vous pouvez utiliser le guide d'étude pendant que vous passez cet examen.

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MERCREDI 3/10 (TEST DE RECHERCHE/TEST DE MAKE UP/CORRECTIONS)

1. Les étudiants qui étaient absents hier doivent venir en classe aujourd'hui pour préparer leur examen.

2. Les étudiants qui ont passé leur test hier doivent revoir leur examen, en particulier les questions manquées, et peuvent commencer les corrections.

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JEUDI 3/11 (TEST DE RECHERCHE/TEST DE MAKE UP/CORRECTIONS)

1. Les étudiants qui n'ont pas passé le test le passeront en classe aujourd'hui.

2. Les étudiants qui ont déjà passé leur test doivent revoir leur examen, en particulier les questions manquées, et compléter les corrections si nécessaire.

3. Complétez les devoirs manquants.

HÉRÉDITÉ 20/21

MERCREDI 3/24 (FERTILISATION ET PREMIERS DEVELOPPEMENT EMBRYONNAIRE)

1. Tout d'abord, les étudiants rempliront le formulaire Google AP Practice Test pour me faire savoir comment ils pensent qu'ils aimeraient passer un examen pratique.

2. Ensuite, nous discuterons (et regarderons des clips vidéo) sur la fécondation et le développement embryonnaire précoce pour aider à préparer l'unité de l'hérédité.

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JEUDI 25/3 (MÉIOSE)

1. Tout d'abord, les élèves complèteront une revue de sonneur de mitose

2. Ensuite, nous prendrons des notes sur la méiose

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VENDREDI 3/26 (REVUE MEIOSE)

1. Tout d'abord, regardez la vidéo Edpuzzle sur Meiosis.

2. Ensuite, complétez le Meiosis Gizmo en suivant les instructions ci-dessous.

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LUNDI 29/3 (Caryotypes et Non-disjonction)

1. Tout d'abord, les élèves effectueront un examen de cloche de la méiose

2. Ensuite, nous passerons en revue les questions du devoir de la journée numérique de vendredi.

3. Ensuite, nous discuterons des caryotypes et de la non-disjonction

4. Enfin, les étudiants termineront le devoir d'analyse des caryotypes

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MARDI 3/30 (Héritage mendélien/Punnetts simples)

1. Tout d'abord, les élèves effectueront une révision au son des cloches de la traversée et de la non-disjonction

2. Ensuite, nous discuterons de l'hérédité mendélienne simple

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MERCREDI 3/31 (Punnett Pratique et préparation pour l'héritage lié au genre)

1. Tout d'abord, les étudiants rempliront une feuille de travail pratique de Punnett (cela doit être rempli avant le cours de demain).

2. Ensuite, les élèves prendront des notes sur la façon d'écrire les génotypes liés au genre.

3. Ensuite, les étudiants rempliront un ticket « Vérifier la compréhension » pour les leçons d'hier et d'aujourd'hui.

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JEUDI 4/1 (Héritage lié au genre)

1. Tout d'abord, nous avons passé en revue la pratique de Mendel simple Punnett d'hier.

2. Ensuite, nous avons discuté de la façon de créer des génotypes liés au genre et des carrés de Punnett.

3. Ensuite, les élèves ont rempli une fiche pratique liée au genre sur Google Classroom.

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LUNDI 4/5 (Héritage Complexe)

1. Tout d'abord, les étudiants rempliront une revue Punnett sur l'héritage lié au genre.

2. Ensuite, nous discuterons et mettrons en pratique 4 types de modèles d'héritage non mendélien.

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MARDI 4/6 (Pratique Héritage Complexe)

1. Tout d'abord, les élèves rempliront une feuille de pratique d'héritage complexe sur Google Classroom.

2. Ensuite, les étudiants peuvent commencer leur laboratoire sommatif pour cette unité sur Gizmo, appelé Meowsis- Due avant le cours du lundi 4/12.

3. De plus, les devoirs facultatifs sont maintenant disponibles - une lecture guidée et un devoir de vocabulaire. Ceux-ci sont dus le lundi 4/19.

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MERCREDI 4/7 (QUIZ HÉRÉDITÉ ET MEOWSIS)

1. Tout d'abord, les élèves doivent remplir le quiz sur l'hérédité ci-dessous. Il sera ouvert de 8h à 23h59

2. Ensuite, les étudiants peuvent continuer à travailler sur leur laboratoire sommatif pour cette unité sur Gizmo, appelé Meowsis- Due avant le cours du lundi 4/12.

3. De plus, les devoirs facultatifs sont maintenant disponibles - une lecture guidée et un devoir de vocabulaire. Ceux-ci sont dus le lundi 4/19.

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JEUDI 4/8 (RÉCUPÉRATION)

1. Premièrement, si les élèves N'ONT PAS répondu à leur questionnaire hier, ils doivent le faire aujourd'hui. Il sera ouvert de 8h à 23h59

2. Ensuite, les étudiants peuvent continuer à travailler sur leur laboratoire sommatif pour cette unité sur Gizmo, appelé Meowsis- Due avant le cours du lundi 4/12.

3. De plus, les devoirs facultatifs sont maintenant disponibles - une lecture guidée et un devoir de vocabulaire. Ceux-ci sont dus le lundi 4/19.

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VENDREDI 4/9 (APERÇU DU PEDIGREE)

1. Premièrement, si les élèves N'ONT PAS répondu à leur questionnaire mercredi, ils doivent le faire aujourd'hui. C'est la dernière occasion de le prendre en ligne. Il sera ouvert de 8h à 23h59

2. Ensuite, les étudiants doivent suivre le didacticiel Pedigree sur le lien ci-dessous. Il y a quatre parties répertoriées sur la gauche de l'écran : 2 vidéos, une critique et 4 questions de quiz.

3. Ensuite, les étudiants doivent terminer le laboratoire Meowsis Gizmo, dû lundi par heure de classe.

4. Disponible aujourd'hui : le guide d'étude et le CRAM pour l'examen d'hérédité.


Voir la vidéo: Contrôle de qualité en biologie médicale: microbiologie (Janvier 2022).